①菌样
•需注明载体类型和抗性，我们常备Amp,Kan两种抗生素，其他抗性自备；
•应为高拷贝质粒，对于低拷贝质粒，请直接提供约3μg左右纯化质粒或4ml左右培养好的新鲜菌夜；
•需培养的菌液：要求提供的量至少500μl过夜培养的菌液，封口保存，防止交叉污染或渗漏；
•若是特殊抗生素：请提供2-4ML菌液或提取好的质粒用于测序；
•无需培养的菌液：要求提供的量至少为2ml已培养好的菌液；
•大量样品测序：建议在96孔深孔培养板板中培养；
•注意：关于噬菌体，我们绝对不收菌液，只收抽提好的质粒，请一定要注意；

②质粒（除特殊样品，我们一般不建议客户提供质粒）
•您自行抽提的质粒务必溶于20μl（视反应数增加）双蒸水中，电泳检测浓度大于50ng/μl浓度；
•如有可能，同时提供1ml左右含有相应质粒的菌液备用；
•若您要测通长片段的模板，请您加大质粒的提供量，大质粒同时注明载体长度，拷贝数低也要注明；
•必须写明载体名称，插入片段长度；

③PCR已纯化
•您自行纯化的PCR产物务必溶于双蒸水，浓度要求至少35ng/μl，量至少20μl以上，并注明片段长度，长片段需适当增加量，便于核对样品测序是否有问题，同时方便安排需要测通的样品测序和拼接工作；
•若您要长期测序请您加大PCR纯化产物的量；
•您回收的PCR产物务必为单一条带，否则将无法得到理想的测序结果。

④PCR未纯化
•PCR未纯化产物测序要求片断长度大于100BP小于5KB，如大于5KB**建议您克隆后测序。浓度要求至少50ng/μl，量至少25μl，并注明片段长度，便于核对样品测序是否有问题，同时方便安排需要测通的样品测序和拼接工作；
•建议您送PCR未纯化产物是电泳可见的单一明亮的特异性条带；
•核对所送样品是否有渗漏现象,如有,建议您重新送样。

5全血

•全血至少需要1ml

测序用引物要求非常严格，不同于PCR用引物。PCR用引物一般只要能和模板结合，3’端的几个碱基能完全配对，即使引物长达80～100多个碱基，只要调整PCR反应条件，也能成功进行PCR反应。而测序用引物便不一样了，必须严格符合以下要求。本公司的测序用引物用引物设计软件Primer及primer5设计。在本公司测序时，我们可免费帮助设计测序用引物。

（1）长度在15～25个碱基左右，一般选择20个碱基（根据GC含量作适当调整），

（2）3’端尽量选择G或C碱基（但不绝对），以增加与模板的结合能力。

（3）Tm温度应选择50℃～70℃之间。

（4）GC含量应选择在50%左右，尽量避开A、T、G、C的连续结构。

（5）避开引物自身形成发夹结构或引物二聚体结构等复杂结构。

（6）保证引物和模板100%匹配，特别是3’端的几个碱基一定要100%匹配。同时必须严格保证引物和模板之间只能有一个结合位点。

自备引物要求
•引物建议经过PAGE纯化方可测序,浓度要求不低于5pmol/μl(或5μmol/L)，体积大于10μl(干粉也可,务必标明OD值）；
•请提供引物全序列、PCR退火温度，以供参考（引物长度18-22bp为宜）,同时标明引物序列，以便帮助您更好地分析测序结果；
•随机引物、标记引物和简并引物不适合用于测序。
样品与引物的保存
您提供的样品及引物没有特殊情况我们保留一个月，超过期限将全部处理。如果您要用超过一个月的样品或引物测序请您重新提供样品和引物。

1、一代测序结果

测序公司发送的测序结果一般有一个峰图文件和一个序列文件，峰图文件为ABI格式，用chromas软件（网上可下载）打开。峰图用四种颜色的波形代表四种碱基的信号强度；正常的峰图，波峰与波谷清晰，峰与峰之间的距离均匀；比较理想的测序结果在底部应该没有杂峰干扰；

2、起始序列说明

1）测序结果的前几十bp不能用（下图中黄色区域标出的区域），在拼接序列或序列比对时需要先去除这部分不太可靠的数据，以免影响分析结果；

2）在使用PCR引物测序时由于PCR引物上的碱基是不带染料的，所以检测不到信号，在测序结果中也找不到引物的序列。如连接到载体上，使用载体上的通用引物测序则可以找到PCR引物；

3、有效读长

测序公司给出的峰图在1000～1200bp之间，但超过800bp后的各种波之间有重叠，波峰有钝化现象，碱基与碱基间的距离有时突然加大（此图中的812bp~813bp），这些现象都会影响结果的准确性，所以只能做为参考．所以说有效片段为800bp左右．

4、SNP位点

SNP位点为纯合时成单峰，若主杂合子时，会形成套峰现象；测序公司给的结果序列文件通常只读主峰——即序列文件不会报告SNP杂合，需要自己打开峰图文件判读。

1.测序结果不到800Bases是什么原因？

（1）G/C rich、G/C Cluster。

这种情况一般表现为测序信号突然减弱或消失(图1，图2)

如在DNA样品中的DNA序列分布匀称，没有复杂结构时，正常的测序反应能保证达到800Bases以上。但有一些DNA样品立体结构复杂，造成聚合酶延伸反应终止，测序信号突然减弱或消失，或者测序结果出现套峰现象，出现这些现象的原因由DNA模板本身所造成。

图1 GC引起的信号减弱

图2 G/C rich引起的信号消失

（2）A、T的Poly结构

   这种情况一般表现为A、T连续结构后面的测序结果出现套峰。根据文献记载。原因在于聚合酶进行聚合反应时，由于A或T的连续，聚合酶难以识别完整的每个A或T，在某个A或T的后面便开始进行A或T连续结构以后序列的聚合反应(打滑现象)，造成测序结果紊乱，出现套峰。一般在多少个A或T的后面能出现这种情况呢？现在还没有这方面的报道。根据我们的经验，这一情况的出现和A或T的连续结构后面的序列的排列情况有着直接的关系。有时10多个A或T的连续结构后面便出现套峰，但有时60～70个A或T的连续结构后面的序列也一样可以完整地读出来。具体情况还有待考证。一般来说，PCR片段直接测序时，A或T的连续结构后面的序列测序结果都会出现套峰。原因在于测序时经历了PCR反应及测序反应(测序反应本身也是PCR反应)二次聚合酶的打滑现象。

图3 polyA引起的套峰

（3）原因不明的复杂结构，测序结果出现突然信号减弱或消失

从序列上看，DNA碱基排列并无特别异常。估计是DNA整体出现复杂结构，从某一位置开始聚合酶的聚合反应便无法进行。

图4 复杂结构引起的信号中断

2.出现套峰是什么原因？

在测序反应中，模板或引物的原因都可能造成套峰的形成，归结其形成原因有以下几点：

（1）测序引物在模板上有两个结合位点(图5)；
（2）模板不纯，如果是质粒或是菌液，原因是非单克隆(图6)，如果是PCR,原因为非特异性条带(图7)；
（3）模板序列的特殊结构，如poly结构、发卡结构等(图8)；
（4）引物降解，或引物不纯(图9，图10)。

图5 双引物结合位点引起的套峰   

图6 由于质粒或菌液为非单克隆引起的套峰   

图7 PCR为非特异性条带引起的套峰   

图8 模板特殊结构引起的套峰

图9 引物轻微降解或引物不纯引起的套峰

图10 引物严重降解或引物不纯引起的套峰   

解决方案汇总

1.样品测序无信号

可能是引物结合位点不存在或被破坏；建议更换引物测序或重新提供样品测序。

2.样品测序信号差

可能是引物或模板的质量不高或是引物和模板的匹配性不好引起的，也可能是样品浓度偏低；建议提供高质量样品测序。

3.样品测序衰减

可能是由于特殊结构如Poly结构、重复序列、回文结构、发卡结构、GCrich、AT富集等导致的测序衰减，由于是样品本身结构问题无法优化建议反向测序进行拼接以得到完整序列，还有一种衰减的情况就是在一段正常峰型后逐渐衰减，可能是模板量反应量不足导致，建议制备高浓度模板测序。

4.样品测序套峰

套峰细分的话有如下几种情形:

①全双峰：多引物结合位点（针对菌液、质粒样品），非特异性扩增（针对PCR产物）；

②前双峰：多引物结合位点，其中一套模板测序中断（针对菌液、质粒样品），多引物结合位点（PCR未纯化样品），引物二聚体或小片段干扰（针对PCR已纯化样品）；

③中间双峰：非单克隆（针对质粒、菌液样品），碱基缺失或等位基因双模板（针对PCR未纯化样品）；

④后双峰：非单克隆（针对菌液、质粒样品），碱基缺失（针对PCR样品）；

针对二聚体及小片段干扰的情况建议电泳切胶回收纯化；针对多引物结合位点的情况建议更换引物测序或反方向测通样品；针对碱基缺失建议克隆测序；针对非单克隆建议在克隆无误的前提下重新挑取单克隆测序；针对非特异性扩增建议优化反应条件重新制备样品测序；针对等位基因双模板建议克隆测序。

5.样品测序中断

可能样品存在特殊高级结构，导致dNTP和ddNTP在某一碱基位点后无法与模板结合，测序酶无法继续延伸，建议使用反向引物进行测序经拼接后可以得到完整序列；或酶切后亚克隆测序。

6.样品测序移码

测序从开端发生移码可能是引物发生降解，建议重新提供引物；测序局部出现移码，可能样品存在特殊高级结构，建议反向测通。

7.样品测序底峰干扰

可能测序引物不纯，建议将引物进行PAGE胶纯化后在进行测序或重新提供引物测序；可能测序样品不纯，混有正、反向引物，建议重新制备样品测序。